
ОБОБЩЕНИЕ
Цель: Определить эффективность обработки помещения газообразной перекисью водорода против жизнеспособных микобактерий туберкулеза.
Методы и результаты: Примерно 8 х 10 4 – 2*3 х 10 6 КОЕ микобактерий туберкулеза H37Rv и микобактерий туберкулеза Пекинский штамм были высушены в среде объемом 10 мл и упакованы в проницаемые для пара пакеты Tyvek и распределены по поверхностям в лаборатории. Затем в комнату нагнеталась газообразная перекись водорода через систему вентиляции. Были опробованы разные параметры экспозиции. Экспозиция газообразной перекисью водорода привела к стерилизации в трех разных вариантах тестирования.
Выводы: Технология газообразной перекиси оказалась эффективной в уменьшении концентрации и уничтожении микобактерий туберкулеза.
Значимость исследования: Методика газообразной перекиси водорода служит альтернативой формальдегидной стерилизации, особенно в лабораториях туберкулеза и вивариях.
Ключевые слова: газообразная перекись водорода, дезинфекция, виварий, деконтаминация комнаты, инактивация.
ВСТУПЛЕНИЕ
Микобактерия туберкулеза является одной из основных причин заболеваемости и смертности во всем мире и становится все более значимой проблемой из-за появления полирезистентных штаммов (Всемирная организация здравоохранения 2004). Основной пути передачи – через аэрозоли (например при кашле) и вдыхание. В основном это происходит из-за специфической липофильной оболочки (Bestra и Chatterjee 1994; Brennan и Nikaido 1995; Baffe и Drapper 1998). Исследовательские лаборатории и лаборатории клинических исследований с потенциальным риском заражения должны быть оснащены оборудованием для деконтаминации поверхностей и материалов в дополнение к методикам мойки. Традиционная стерилизация формальдегидом это затратная, разрушительная, токсичная и канцерогенная методика. Автоматическая система газообразной перекиси водорода, все более широко использующаяся в обработке вивариев (Krause 2001), предоставляет альтернативу формальдегидной стерилизации. Поскольку газообразная перекись водорода быстро разлагается на составляющие – кислород и воду, она не имеет последствий для окружающей среды, аналогичных при применении формальдегида. За последнее десятилетие был доказан широкий спектр эффективности газообразной перекиси водорода против бактерий, вирусов, грибов и бактериальных спор (Klapes и Vesley 1990; Block 1991; Heckert 1997; Kokubo 1998). Целью данного исследования было доказать эффективность газообразной перекиси водорода против штаммов туберкулеза H37Rv и клинического штамма туберкулеза Пекин/W в модели вивария.
Материалы и методы
Подготовка образцов и маркировка
Штамм туберкулеза Пекин/W был любезно предоставлен доктором Ван Суулингеном из Национальной Лаборатории Микобактерий, Битлховен, Голландия. Две производные широко используемого в лабораториях штамма H37Rv были задействованы в исследовании: бактерия, использующаяся в нашей лаборатории (MPIIB) и H37Rv из лаборатории профессора W. Jacobs, Колледж им. Альберта Эйнштейна, Бронкс, Нью-Йорк, США. Бактерия была выращена на питательной среде Middlebrook 7H9 (дифко, Детройт, MI, США), содержащей 0,05% Tween-80, дополненной альбумин-декстроза-каталазой. Каждого вариант генотипа, содержащий от 6 х 104 до 107 КОЕ был помещен в 24 различных лунки с питательной средой (Becton Dickinson, Оксфорд, Англия) и оставлены на 30 мин, пока не начались признаки высыхания. Бактериальная плотность была определена разведением в стерильном фосфатном солевом растворе (PBS) и агаре 7H11 сразу после высыхания. Контрольные чашки были закрыты парафильмом для предотвращения излишнего высыхания и оставлены в ламинарном боксе (в другом помещении) на тоже самое время, что и рабочие образцы. Сами образцы были размещены в упаковку Tyvek (Vis-U-All Iireg: Компания Стерис/Дю-понт Ментор, Огайо, США), затем расположены в комнате, после чего с чашек сняли крышки для свободного проникновения газообразной перекиси водорода через проницаемые для пара пакеты Tyvek. После завершения времени экспозиции образцы разбавили в PBS с 0,05% Tween-80 на агаре Middlebrook 7H11 с 10% альбумин-декстрозе-каталазе (Difco), количество КОЕ было посчитано после инкубации при 37 С в течение 28 дней.
Деконтаминация комнаты
Эксперименты проводились в помещении лаборатории с системой воздухообмена объемом 64,5 м3 (19,5 м2 и 3,3 м высота), в комнате располагалась скамейка, ламинарный бокс и шкаф. Температура в комнате была в диапазоне от 20 до 22 С при относительной влажности 40%. Газообразная перекись водорода нагнеталась в помещение при помощи системы деконтаминации VHP ® 1001 (Стерис), описанной в других источниках (Krause 2001). Вкратце это компактная мобильная система, которая производит газообразную перекись и нагнетает ее в замкнутое пространство по закрытому циклу через систему вентиляции и вытяжки комнаты для эксперимента. На входе и вытяжке системы вентиляции, находящихся на потолке, устанавливались фильтры (Camfil Farr, Борас, Швеция). Аэрация в комнате обеспечивалась системой вентиляции (рисунок 1). Цикл деконтаминации состоял из 4 фаз: осушение, нагнетание, деконтаминация и аэрация. Во время фазы осушения относительная влажность воздуха снизилась до 30% за счет циркуляции воздуха по закрытому циклу. Во время фаз нагнетания и деконтаминации уровень газообразной перекиси возрастал и поддерживался на установленных уровнях в системе вентиляции путем испарения 35% жидкой перекиси водорода (Стерис) . Очень важно быть уверенными (контролировать при помощи системы) , что концентрация газообразной перекиси водорода находится ниже точки конденсации; конденсация (трансформация газообразной перекиси в жидкость) может повредить поверхности и представляет опасность при обработке помещений. Во время цикла аэрации происходит окончательное разложение перекиси водорода посредством циркуляции через катализатор. Параметры каждой из фаз рассчитывались специально для данной комнаты исходя из значений температуры и влажности. Параметры всех трех циклов отражены в таблице 1. Концентрация газообразной перекиси в помещении регистрировалась датчиком Guided Wave NIR H2O2 для контроля концентрации, которая должна была составлять 0·4 мг 1-1 и снижаться во время фазы аэрации. В комнате были размещены два вращающихся вентилятора (SMC Networks) , которые работали во время экспозиции, обеспечивая циркуляцию воздуха. После завершения фазы аэрации концентрация газообразной перекиси в помещения была измерена для контроля безопасности (концентрация менее 1 ppm). Образцы, содержащие штамм туберкулеза H37Rv и туберкулез Пекин/W или туберкулез H37Rv (MPIIB) были размещены в различных частях помещения, как показано на рисунке 1.
Рисунок 1. Расстановка в комнате для деконтаминации. AI — вентиляция вход, AO — вытяжка, B — скамья, C — открытый шкаф, D- дверь, SC — ламинарный бокс, V1, V2 — вентиляторы, расположенные в ближнем правом и дальнем левом углу помещения. Места расположения чашек с образцами пронумерованы цифрами: 1 — на скамье, 2 — внутри открытого шкафа, 3 — на верхней верхней крышке ламинарного бокса ниже потолка, 4 — на полу в углу комнаты.
Таблица 1: Параметры цикла экспозиции микобактерий туберкулеза газообразной перекисью водорода
| Тест 1 | Тест 2 | Тест 3 | |
| Фаза осушения | |||
| Воздушный поток (м3 ч-1) | 32 | 36 | 36 |
| Абсолютная влажность (%) | 30 | 30 | 30 |
| Время (мин) | 20 | 20 | 20 |
| Нагнетание | |||
| Воздушный поток (м3 ч-1) | 32 | 36 | Фаза нагнетания не присутствовала в этом цикле |
| Скорость впрыска (г мин-1) | 8-9 | 12 | |
| Время (мин) | 20 | 15 | |
| Деконтаминация | |||
| Воздушный поток (м3 ч-1) | 32 | 36 | 36 |
| Скорость впрыска (г мин-1) | 7-2 | 4-7 | 9 |
| Время (мин) | 60 | 90 | 105 |
| Аэрация | |||
| Воздушный поток (м3 ч-1) | 32 | 36 | 36 |
| Время (мин) | 270 | 240 | 240 |
Химические и биологические индикаторы
Химические (VHP indicator, Стерис) и биологические индикаторы, содержащие 5 х 105 спор Bacillus Stearothermophilus на металлической подложке (HMV 091, Apex Laboratories, NC, США) были расположены в комнате на различных уровнях от пола для мониторинга присутствия перекиси водорода. Также они были размещены в пакеты Tyvek с тестовыми образцами. По завершению цикла химические индикаторы оценили на изменение цвета, а биологические были выращены на питательной среде (CASO medium, Merck, Германия) при 55 С в течении 7 дней, рост оценивался визуально по появлению мутности. Дэффективность биологических индикаторов оценивалась инкубированием проб не подверженных экспозиции.
Результаты
Резистивность к газообразной перекиси водорода микобактерии туберкулеза была протестирована на примере вивария. Протестированные бактериальные генотипы включали в себя клинические штаммы и лабораторные штаммы, микобактерия туберкулеза Пекин/W и микобактерия туберкулеза H37Rv соответственно. Исходя из различий фенотипов мы включили в эксперимент штамм H37Rv из другой лаборатории (Нью-Йорк) в дополнение к штамму нашей лаборатории (MPIIB). Результаты 3 тестов отражены в таблицах 2-4. Все 3 теста показали нулевой рост микобактерий.
Таблица 2: КОЕ в чашках после первого теста
|
Месторасположение образца* |
Генотип | КОЕ/10 мл | Среднее КОЕ/10 мл |
| Контрольные образцы | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 2·8 х 10 5 | 2·3 х 10 6 |
| Чашка 2 = 4·3 х 10 6 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 6·0 х 10 5 | 6·0 х 10 5 | |
| Чашка 2 = 6·0 х 10 5 | |||
| Пекин/W | Чашка 1 = 1·0 х 10 5 | 8·0 х 10 4 | |
| Чашка 2 = 6·0 х 10 4 | |||
| На скамье (середина комнаты (1)) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Пекин/W | Чашка 1= 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Сверху ламинарного бокса (3) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | 0 | ||
| Пекин/W | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| На полу в углу (4) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Пекин/W | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 |
* Расположение образцов соответствует рисунку 1. Контрольные образцы находились в ламинарном боксе в другом помещении и расположены были одновременно с рабочими образцами.
Таблица 3: КОЕ в чашках после второго теста
|
Месторасположение образца |
Генотип | КОЕ/10 мл | Среднее КОЕ/10 мл |
| Контрольные образцы | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 2·9 х 10 5 | 3·4 х 10 6 |
| Чашка 2 = 4·0 х 10 6 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 1·5 х 10 5 | 1·3 х 10 5 | |
| Чашка 2 = 1·2 х 10 5 | |||
| Пекин/W | Чашка 1 = 4·0 х 10 5 | 2·7 х 10 4 | |
| Чашка 2 = 1·4 х 10 5 | |||
| На скамье (середина комнаты (1)) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Пекин/W | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| На полу в углу (4) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| H37Rv (NY) | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Пекин/W | Чашка 1 = 0 | 0 | |
| Чашка 2 = 0 |
* Расположение образцов соответствует рисунку 1. Контрольные образцы находились в ламинарном боксе в другом помещении и расположены были одновременно с рабочими образцами.
Таблица 4: КОЕ в чашках после 3 теста
|
Месторасположение образца * |
Генотип | КОЕ/10 мл | Среднее КОЕ/10 мл |
| Контрольные образцы | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 3·1 х 10 6 | 3·4 х 10 6 |
| Чашка 2 = 1·3 х 10 6 | |||
| На скамье (середина комнаты (1)) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Внутри шкафа (2) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| Сверху ламинарного бокса (3) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 | |||
| На полу в углу (4) | H37Rv (MPIIB) | Чашка 1 = 0 | 0 |
| Чашка 2 = 0 |
* Расположение образцов соответствует рисунку 1. Контрольные образцы находились в ламинарном боксе в другом помещении и расположены были одновременно с рабочими образцами.
Количество КОЕ в контрольных образцах составляло от 6·0 х 10 4 до 4·3 х 10 6. Эти значения соответствуют 7-44 % от начальных значений посева в 10 мкл (сведения не показаны). Несмотря на то, что в контрольных пробах произошло уменьшение обсемененности на 0.35 — 1,1 log за время экспозиции ( в зависимости от времени экспозиции в тесте) это происзошло из-за высыхания питательной среды. Но это уменьшение является незначительным по сравнением с тестовыми образцами,где уменьшение составило более 6 log, в образцах, подверженным экспозиции. Все химические индикаторы, включая и находящиеся в пакетах Tyvek изменили цвет. Все биологические индикаторы, включая и расположенные в пакетах показали нулевой рост и отсутствие мутности после 7 дней инкубации, что означает 100% уничтожение. Результаты биологических индикаторов показали эффективность распределения газообразной перекиси внутри помещения.
ОБСУЖДЕНИЕ
Перекись водорода (H2O2) выступает в качестве дезинфектанта, производя активный кислород (гидроксильные радикалы, сверхокислительные анионы), который разрушает компоненты клетки — такие как ДНК, липиды и протеины. Повышенная сопротивляемость к перекиси водорода во многом зависит от производства суперокислительной дисмутазы, каталазы и других пероксидаз. Исследования резистивности микобактерий туберкулеза к окислителям показали, что низкие концентрации перекиси водорода в диапазоне от 10 до 100 ммоль-1, что составляет примерно 0,034 — 0,34% может уничтожить бактерию (Дессурже, 2001, Эдвардс 2001). Микробная резистивность к окислителю может быть преодолена повышением концентрации (МакДоннелл и Рассел 1999). Концентрация перекиси водорода для обработки поверхностей составляет 3%. Однако перекись водорода проявляет более сильные бактерицидные свойства в состоянии газа (Block 1991). Устройство, описанное в данном исследовании, использовало перекись водорода в концентрации 35% для создания «сухого» пара в помещении концентрации 0,4 мг л-1. Наши исследования эффективности методики против сухой микобактерии туберкулеза показали, что методика газообразной перекиси водорода служит альтернативой формальдегидной обработке, особенно для деконтаминации вивариев и лабораторий по исследованиям туберкулеза. Необходимо отметить, что объем обрабатываемого помещения зависит от аппарата, например система VHP1000 позволяет обрабатывать помещения до 230 м3, но несколько таких аппаратов позволяют обрабатывать большие объемы. Параметры каждой фазы должны выбираться исходя из условий работы. Последующие исследования будут направлены на проверку совместимости параметров деконтаминации на соответствие существующим стандартам стерилизации при контаминировании микобактерией туберкулеза.
Общее
Авторы хотят поблагодарить Жанет Щерф и Тарсану Тармалингам за великолепную техническую поддержку и доктора Нэнси Хамно за критику при чтении.
А.Канерт, П. Сеилер, М. Штейн, Б. Азе, Дж. Макдоннел и С.Х.Е. Кауфманн
Институт Инфекционной биологии им. Макса Планка, Берлин, Германия.
СПИСОК ИСТОЧНИКОВ
Besra, G.S. и Chatterjee, D (1994) Липиды и карбогидраты микобактерии туберкулеза. В Туберкулез: патогенез, защита и контроль под ред Bloom, B.R. Стр 285-306. Вашингтон, округ Колумбия: ASM Press.
Block, S.S. (1991) Дезинфекция, стерилизация и сохранение, Филадельфия, PA, Leas & Febiger
Brennan, P.J. И Nikkado, H. (1995) Оболочка микобактерии, Biochem 64, 29-63
Daffe, M. и Drapper, P. (1998) Слои оболочки микобактерий со ссылкой на патогенез Microb Phisiol 39, 131-203
Dessurget, O., Stewart, G., Neyrolles, O., Pescher, P., Young, D., Marchal, G. (2001) Роль медно-цинковой сверхокислительной дисмутазы в жизни микобактерии туберкулеза. Infect Immun 69, 529-533
Edwards, K.M., Cyanamon, M.H., Volandri, R.K.R., Hager, C.C., DeStefano, M.S., Tham, K.T., Lakey, D.I., Bochan, M.R. (2001) Особенности сверхокислительной дисмутазы в микобактерии туберкулеза Am J Respir Crit Care Med 164, 2213-2219
Heckert, R.A., Best, M., Jordan, L.T., Dulac, G.C., Eddington, D.L., Sterritt, W.G. (1997) Эффективность газообразной перекиси водорода против экзотических вирусов животных Environ Microbiol 63, 3916 – 3918
Klapes, N.A. И Vesley, D. (1990) Перекись водорода в форме пара для деконтаминации и стерилизации поверхностей Environ Microbiol 56, 503 – 506.
Kokubo, M., Innoue, T. и Akers, J. (1998) Резистивность обычных спор семейства Bacillus к газообразной перекиси водорода. PDA J Pharm Sci Technol 52, 228-231.
Krause, J., McDonnell, G. и Riedesel, H (2001) Биодеконтаминация вивариев и теплочувствительного оборудования газообразной перекисью водорода, Contemp Top Lab Anim Sci 40, 18-21
McDonnell, G., Russel, A.D. (1999) Антисепсис и дезинфектанты: активность, действия и резистивность, Chin microbiol Rev 12, 147-179
Всемирная организация Здравоохранения (2004) Всемирный атлас инфекционных заболеваний, Женева: ВОЗ.
Версия для печати